2、绿藻细胞中的色素主要是叶绿素,细胞呈绿色,是一种偏黄的绿颜色;蓝藻细胞中叶绿素较少,藻蓝素较多,细胞呈现的是蓝绿色,蓝藻也叫
blue-green
algae
。
这一点其实就够区分蓝藻和绿藻了,都是长期实践的总结啊。但要多看会看,区别很细微噢。
3.蓝藻本质上是单细胞藻类,一般有单细胞,丝状和聚集成群体的类型,绿藻有的单细胞的,也有多细胞的群体。
那你要先准备实验设备。
除开光学显微镜(一般够了)之外,还需要镊子,解剖针,载玻片,盖玻片,培养皿等。不同藻类如果要进一步辨别,或者欣赏更小的结构,则还需要其他的东西(后面会举几个例子说)。
实验试剂一般准备三样,一个蒸馏水,一个淀粉碘化钾溶液,另外一般还要一个0.1%的亚甲基蓝。后两种东西依据实际需要来选,譬如观察蓝藻的淀粉,那就要淀粉碘化钾。
接下来是做临时装片或者水封片。
小型藻类取一小片待测材料,放在载玻片上,注意期间要用镊子分散开材料,尽量避免出现材料大面积重叠两三层,就这一点是新的,要注意。其余步骤同临时装片制作,还有染色之类手法,你初中应该学过了,就不说了。
大型藻类,譬如海带之类,那这种指定是不会动的,就是做成临时或者永久封片了,一般从他假叶上直接切若干个2cmX0.5cm的样本下来,找其中最完整的做水封片。
先用低倍镜找到细胞,再换到高倍镜【如果有需要进一步切换到油镜,尤其是体积很小的原核藻类】(转换显微镜过程,以及后续处理高中应该学了,包括粗准焦,细准焦应该聊过了,油镜高中没教如果大学还没学,或者说是高中兴趣组,不会请另外提。)
接下来,观察什么?
单细胞你可以观察下一些有鞭毛,可运动的藻类,是怎么运动的。
多数多细胞藻,或者群生的就没法运动了,那么就好好看看他们的外形特点,看一看有没有特殊的细胞(譬如处于分裂时期的真核藻类),一些细胞死亡的时候形状也不一样(譬如颤藻,你要看看他的分离盘),有一些数一数胶质丝内部的藻丝数量,多细胞藻类要看一看不同部位的细胞,结构有何差异,他们细胞都是怎么分化的
大型藻类,譬如海带,这种出现结构显著分化的,那你就必须辨认一下他的各层细胞差异,试着看一看他的表皮细胞是否等大(不等大!那外层大还是内层大,留待你自己观察)有几层,再找一找中央髓层,看一看是什么结构
大型藻类可能有的有孢子囊,如果看到你也可以记录下孢子囊你看到是怎样的。你能不能看到孢子的模样?
如果有多个实验样本,那你必须左眼看的同时,右眼控制手那笔,记录不同藻类的差异(可以在草稿纸上画一画草图,或者用文字说明)。看一看单生,群生,多细胞分化的藻类,他们各有什么特点。最后在实验报告上要体现为列表比较。
实验报告后面具体要写什么,那就是你自己的事了。我大概就给你提这些。
解决方法1:目镜视野计数法直接得到的是单位面积视野里藻类细胞的个数,或者说,面积密度。要把面积密度换算成藻液密度,可以先算出一滴藻液的体积,乘上你滴在显微计数板上的藻液的滴数,得到总体积。用数出的面积密度乘以计数板上的方格数得到藻类细胞总数。最后用藻类细胞总数除以体积,即可得到藻液的密度。此种方法直接但繁琐,误差也比较大,不推荐使用。
方法2:如果你要的密度的单位不是“个/升”而是“克/升”,建议你用离心的方法得到沉淀物,除以总重即可。如果没有条件离心,可以加入少量明矾,在溶液中形成絮状沉淀,把藻细胞聚沉下来,还可以用一定规格的硝酸纤维膜滤纸抽滤除去细胞。此种方法很方便。
方法3:如果你要的是“个/升”这个单位,而且要比较精确可靠的结果,那就有点蛋疼了。如果你有已知准确密度的藻液,建议你用它计算出面积密度和体积密度的比例常数(它们二者是成正比的);如果你没有标准藻液,建议你去买标准血球计数板,那种板子使用标准血球溶液定好标的,附有换算公式。
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